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解鎖組織的秘密:深入了解 CLARITY 透明化技術的完整過程

一種革命性的方法,將不透明的生物組織轉變為透明的窗口,以進行前所未有的三維觀察。

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核心亮點

  • 水凝膠支架: 利用丙烯酰胺基水凝膠在組織內部形成網狀結構,牢牢固定蛋白質和核酸,為後續處理奠定基礎。
  • 高效脫脂: 通過 SDS(十二烷基硫酸鈉)和電泳技術(ETC),有效去除散射光線的脂質,實現組織透明化,同時保持結構完整。
  • 三維成像與分析: 透明化後的組織允許光線深入穿透,結合先進顯微技術,實現完整器官或組織樣本的高分辨率三維成像和分子標記分析。

CLARITY 技術簡介

CLARITY(Clear Lipid-exchanged Anatomically Rigid Imaging compatible Tissue hYdrogel)是一種突破性的生物組織透明化技術,由斯坦福大學 Karl Deisseroth 團隊於 2013 年首次提出。其核心目標是解決生物組織(尤其是富含脂質的腦組織)因光線散射而導致的不透明問題。傳統上,研究組織內部精細結構需要進行物理切片,這不僅耗時耗力,還可能破壞組織的三維完整性。CLARITY 技術通過一種創新的化學處理方式,在去除導致不透明的脂質分子的同時,利用水凝膠支架原位固定組織中的蛋白質、核酸等重要生物大分子,從而獲得一個既透明又結構完整的組織樣本。這使得研究人員能夠在無需切片的情況下,對整個器官(如小鼠大腦)進行高分辨率的三維成像和分子分析,極大地推動了神經科學、發育生物學、病理學等領域的研究。

比較 CLARITY 處理前後的小鼠大腦

比較 CLARITY 技術處理前後的小鼠大腦,左側為未處理的不透明大腦,右側為經過 CLARITY 處理後變得透明的大腦。


CLARITY 處理過程詳解:步步深入

CLARITY 的處理過程涉及多個精密的化學和物理步驟,旨在實現最佳的透明效果,同時最大限度地保留組織的生物學信息。以下將詳細拆解其核心流程:

第一步:組織固定與水凝膠單體浸潤

目的:穩定結構並引入凝膠前體

首先,需要獲取新鮮的生物組織樣本(例如,完整的小鼠大腦、器官切塊或活檢樣本)。為了防止組織降解並初步固定其結構,通常使用 4% 的多聚甲醛(PFA)溶液對樣本進行灌流或浸泡固定。固定的時間根據樣本大小和類型而異,通常需要數小時到一兩天。

固定完成後,將組織轉移到含有水凝膠單體(主要是丙烯酰胺 Acrylamide 和少量交聯劑如甲叉雙丙烯酰胺 Bis-acrylamide)、緩衝液以及熱引發劑(如 VA-044)的混合溶液中。此溶液被稱為水凝膠單體溶液。將組織在低溫(通常是 4°C)下浸泡足夠長的時間(例如 24-48 小時),讓這些小分子單體充分滲透到組織的每個角落。

第二步:水凝膠聚合

目的:構建原位支架,鎖定生物大分子

當單體充分浸潤後,通過升溫(通常加熱至 37°C)來激活引發劑,啟動聚合反應。丙烯酰胺單體在交聯劑的作用下,在組織內部原位聚合成一個透明的、具有網狀結構的水凝膠。這個過程至關重要,因為水凝膠網絡會與組織中的蛋白質、核酸等生物大分子發生共價連接或物理纏繞,將它們牢牢地“鎖定”在原有的三維空間位置上。這就形成了一個組織-水凝膠複合物(tissue-hydrogel hybrid),它既保留了組織的精細結構,又為後續去除脂質提供了物理支撐。

CLARITY 技術流程示意圖

CLARITY 技術流程示意圖,展示了從組織固定、水凝膠聚合到脂質去除的關鍵步驟。

第三步:脂質清除(脫脂)

目的:移除光散射源,實現透明化

脂質(尤其是細胞膜和髓鞘中的磷脂)是造成組織不透明的主要原因,因為它們會強烈散射光線。CLARITY 技術的核心突破在於能夠有效去除這些脂質,同時不破壞由水凝膠固定的其他結構。

脫脂通常使用含有離子型去垢劑 SDS(十二烷基硫酸鈉)的緩衝溶液來進行。SDS 能夠有效地溶解脂質。去除脂質主要有兩種方式:

  • 被動清除(Passive Clearing): 將組織-水凝膠複合物長時間浸泡在 SDS 緩衝液中(可能需要數天至數週,取決於樣本大小和溫度),依靠分子的自然擴散來逐漸清除脂質。這種方法相對簡單,但速度較慢。
  • 主動清除(Active Clearing / ETC): 為了加速脫脂過程,CLARITY 引入了電泳組織清除技術(Electrophoretic Tissue Clearing, ETC)。將組織-水凝膠複合物置於特製的電泳裝置中,施加電場。帶負電荷的 SDS 分子會攜帶同樣帶負電荷的脂質膠束(micelles)在電場作用下快速地從組織中遷移出來。ETC 可以將脫脂時間從數週縮短到數天甚至數小時。進行 ETC 時需要精確控制電流、電壓、溫度和緩衝液循環,以避免過熱或對組織造成損傷。

脫脂完成後,原本不透明的組織會變得越來越透明。

第四步:洗滌

目的:去除殘留的去垢劑

脫脂完成後,組織中會殘留大量的 SDS。這些殘留的去垢劑可能會影響後續的抗體染色和成像。因此,需要將透明化的組織在緩衝液(如 PBS 加上 Triton X-100 等非離子去垢劑)中進行充分的洗滌,通常需要反覆更換洗滌液,持續一到兩天,以徹底去除 SDS。

第五步:折射率匹配(Refractive Index Matching)

目的:最大限度減少光散射,達到最佳透明度

即使去除了脂質,組織中的蛋白質、水凝膠骨架和浸泡介質之間仍然存在微小的折射率(Refractive Index, RI)差異,這依然會引起一定程度的光散射,影響成像深度和清晰度。為了獲得最佳的透明效果,需要將洗滌後的組織浸泡在與組織本身(主要是蛋白質和水凝膠)折射率相匹配的溶液中。常用的折射率匹配液包括甘油溶液、蔗糖溶液,或者市售的專用試劑(如 FocusClear™, RapiClear® 等,其折射率通常在 1.45-1.52 之間,與蛋白質的折射率接近)。通過折射率匹配,可以最大限度地減少界面上的光線散射和折射,使光線能夠直線穿透組織,實現真正的光學透明。

經過 CLARITY 處理後的透明小鼠大腦

經過完整 CLARITY 流程處理後的小鼠全腦,呈現高度透明狀態,可以直接進行深層成像。

第六步(可選):分子標記與成像

目的:可視化特定細胞、結構或分子

CLARITY 技術處理後的組織由於其多孔的水凝膠結構,非常有利於抗體、核酸探針或其他標記物的滲透。因此,可以在折射率匹配之前或之後,對透明組織進行免疫熒光染色、原位雜交或其他分子標記技術,以標記感興趣的特定細胞類型(如神經元、膠質細胞)、蛋白質(如突觸蛋白、神經遞質受體)或基因表達。染色完成並進行折射率匹配後,就可以利用共聚焦顯微鏡、光片照明顯微鏡(Light-sheet microscopy)或雙光子顯微鏡等先進成像技術,對整個組織樣本進行高分辨率的三維掃描成像,重建出精細的神經網絡、血管系統或細胞分布圖譜。


關鍵參數與考量

為了確保 CLARITY 實驗的成功,需要對各個步驟中的參數進行優化和精確控制。下表總結了 CLARITY 流程中的一些關鍵環節及其常用條件:

步驟 關鍵試劑/設備 常用條件 主要目的 注意事項
組織固定 4% PFA 4°C,數小時至數天 穩定組織結構 避免過度固定
水凝膠浸潤 丙烯酰胺, Bis-acrylamide, PFA, 引發劑 (VA-044) 4°C,1-2 天 使單體滲透全組織 確保充分滲透
水凝膠聚合 加熱裝置 37°C,2-4 小時 形成水凝膠支架 避免氣泡,控制升溫速率
脂質清除 (ETC) SDS 緩衝液, 電泳儀 37°C,恆定電流/電壓,數小時至數天 去除脂質 監控溫度、pH,防止組織損壞
洗滌 PBS + Triton X-100 室溫,1-2 天,多次換液 去除殘留 SDS 確保徹底洗滌
折射率匹配 RI 匹配液 (如 FocusClear, RapiClear, 甘油) 室溫,數小時至一天 最小化光散射 選擇合適折射率的溶液
分子標記 抗體, 探針 根據標記物優化條件 (溫度, 時間) 標記特定分子/結構 確保標記物能滲透
三維成像 共聚焦/光片/雙光子顯微鏡 根據儀器設定 獲取高分辨率三維圖像 選擇合適物鏡和成像參數

CLARITY 技術流程與特點概覽

下面的思維導圖(Mindmap)直觀地展示了 CLARITY 技術的核心流程、關鍵要素及其帶來的顯著優勢,幫助您快速掌握其全貌。

mindmap root["CLARITY 組織透明化技術"] id1["核心原理"] id1a["水凝膠支架"]:::default id1a1["固定蛋白質/核酸"]:::default id1b["脂質清除"]:::default id1b1["去除光散射源"]:::default id2["處理流程"] id2a["階段一:準備與固定"]:::default id2a1["組織獲取"]:::default id2a2["PFA 固定"]:::default id2a3["水凝膠單體浸潤 (4°C)"]:::default id2b["階段二:水凝膠聚合"]:::default id2b1["熱引發聚合 (37°C)"]:::default id2b2["形成組織-水凝膠複合物"]:::default id2c["階段三:脫脂"]:::default id2c1["SDS 溶液"]:::default id2c2["被動擴散 (慢)"]:::default id2c3["主動電泳 (ETC, 快)"]:::default id2d["階段四:後處理"]:::default id2d1["洗滌 (去除 SDS)"]:::default id2d2["折射率匹配 (RI Matching)"]:::default id2e["階段五:(可選) 標記與成像"]:::default id2e1["免疫熒光染色"]:::default id2e2["原位雜交"]:::default id2e3["3D 顯微成像"]:::default id3["主要優勢"] id3a["結構完整性高"]:::default id3b["分子信息保留好"]:::default id3c["支持全組織 3D 成像"]:::default id3d["兼容多重分子標記"]:::default id4["應用領域"] id4a["神經科學"]:::default id4b["發育生物學"]:::default id4c["病理學"]:::default id4d["腫瘤研究"]:::default

組織透明化技術比較

CLARITY 是眾多組織透明化技術中的一種,與其他方法(如 CUBIC、SeeDB、DISCO/iDISCO 等)相比,各有優劣。下面的雷達圖基於普遍認知,對幾種常用技術在不同維度上的表現進行了比較評估(評分越高代表表現越好或越有優勢)。這有助於研究者根據具體需求選擇最合適的方法。

圖表說明:該雷達圖比較了 CLARITY、CUBIC、SeeDB 和 iDISCO 四種組織透明化技術在六個關鍵維度上的相對表現。例如,CLARITY 在結構完整性和染色兼容性方面得分較高,但在操作簡便性和成本效益方面相對較低。CUBIC 在透明度和透明速度上表現優異。選擇哪種技術取決於具體的研究目標、樣本類型和可用資源。


常見問題解答 (FAQ)

CLARITY 技術的核心原理是什麼?

CLARITY 的核心原理是:首先利用丙烯酰胺等單體在組織內部聚合形成一個透明的水凝膠網絡,這個網絡能物理性地固定住組織中的蛋白質、核酸等非脂質成分;然後利用 SDS 等去垢劑通過擴散或電泳的方式選擇性地去除造成光散射的主要成分——脂質;最後通過折射率匹配液最大限度地減少剩餘結構的光散射,從而使整個組織塊變得透明,同時保持其原有的精細結構。

CLARITY 主要應用在哪些研究領域?

CLARITY 技術被廣泛應用於需要觀察完整組織三維結構的領域,尤其在神經科學中用於繪製神經元連接圖譜(Connectomics)、觀察神經退行性疾病(如阿爾茨海默病)中的病理變化、研究神經發育等。此外,它也應用於發育生物學(觀察胚胎或器官發育)、腫瘤學(分析腫瘤微環境和血管網絡)、病理學(觀察疾病組織的整體改變)以及其他需要對完整生物樣本進行精細結構分析的研究中。

CLARITY 與 CUBIC、SeeDB 等其他透明化技術有何不同?

主要區別在於透明化的化學原理和處理方式:

  • CLARITY: 依賴水凝膠支架固定結構,並通過 SDS 主動或被動去除脂質。優點是結構保持性好,兼容抗體染色;缺點是過程相對複雜,可能需要電泳設備,成本較高。
  • CUBIC: 使用一系列氨基醇類試劑,不僅去除脂質,還能使組織膨脹,同時進行脫色和折射率匹配。優點是透明速度快,透明度高;缺點是可能引起組織尺寸變化,對某些熒光蛋白有影響。
  • SeeDB/FruIt: 主要使用高濃度的果糖、尿素或其他水溶性試劑進行脫水和折射率匹配,對脂質的去除較少。優點是操作相對簡單,對熒光蛋白的淬滅較少;缺點是透明效果和深度可能不如脫脂方法,尤其對脂質含量高的組織。
  • DISCO/iDISCO/uDISCO: 使用有機溶劑(如 THF、DBE)進行脫水和脫脂。優點是透明速度非常快;缺點是可能導致組織收縮,對熒光蛋白有淬滅作用,且有機溶劑毒性較大。

選擇哪種技術取決於樣本類型、研究目標(是否需要保留熒光蛋白、是否需要進行免疫染色)、對組織形變的容忍度以及實驗室的設備條件。

完成 CLARITY 的整個過程大約需要多長時間?

CLARITY 的總處理時間因樣本的大小、類型(尤其是脂質含量)以及選擇的脫脂方式(被動 vs. 主動)而有很大差異。對於一個完整的小鼠大腦:

  • 固定和水凝膠浸潤聚合:約 2-3 天。
  • 脫脂:被動清除可能需要 2-8 週;使用 ETC 主動清除可以縮短至 3-7 天,甚至更快(取決於設備效率)。
  • 洗滌:1-2 天。
  • 折射率匹配:數小時至 1 天。
  • (可選)免疫染色:可能需要額外幾天到一周以上,取決於抗體滲透性和孵育時間。

因此,一個完整的 CLARITY 流程(不包括染色)通常需要 1 到 數週不等。使用優化的方案和設備(如 SmartClear II Pro 等商用系統)可以顯著縮短時間。

CLARITY 處理過程會對組織造成損傷嗎?

CLARITY 技術的設計目標就是最大限度地減少損傷並保持組織結構。水凝膠支架起到了關鍵的保護作用。然而,如果操作不當,仍可能發生一些問題:

  • 物理損傷: 在轉移樣本或操作過程中可能造成物理破損。
  • 化學損傷: 過度固定可能影響抗原表位;聚合過程控制不好可能導致組織膨脹或收縮;ETC 過程中溫度或電流過高可能導致組織變性或燒焦;SDS 清洗不徹底可能影響後續實驗。
  • 分子損失: 雖然水凝膠能固定大部分蛋白質和核酸,但仍可能有少量小分子或未被有效固定的分子在脫脂過程中流失。

總體而言,只要嚴格遵循優化的操作流程並精確控制各步驟的條件,CLARITY 能夠在實現透明化的同時,極好地保持組織的超微結構和大部分分子信息。相較於傳統的物理切片,它在保持三維完整性方面具有顯著優勢。


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參考來源


Last updated May 1, 2025

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